- 蛔蟲卵測定方法
- 點擊次數：14149 發布時間：【2019-07-01】
水質 蛔蟲卵的測定 沉淀集卵法
蛔蟲卵測定適用范圍：
本標準規定了測定水中蛔蟲卵的沉淀集卵法。
本校準適用于地表水和廢水中的蛔蟲卵測定。
當取樣體積為10L時，本方法的檢出限為5個/10L（注：不銹鋼開口直壁容器應選擇10L帶刻度）
規范性引用文件
本標準內容引用了下列文件或其中的條款。凡是不注明日期的引用文件，其有效版本適用于本標準。
HJ/T 91地表水和污水檢測技術規范
方法原理：
沉淀集卵法主要通過樣品的濃縮、雜質分離、鏡檢計數等環節對水中的蛔蟲卵進行測定。用60目全不銹鋼篩網過濾去除樣品中交大的雜質，利用蛔蟲卵比重大于水和易于沉淀的特性過夜沉淀濃縮水樣，用虹吸的放大棄去上清液，用表面活性劑吐溫80作為殘液及沉淀轉移時的清洗劑，進一步離心濃縮轉移的剩余物，收集到的濃縮物用乙酸-乙酸鈉緩沖液混勻，控制溶液PH值，獲得親水-親脂平衡，加入乙酸乙酯吸收水中的脂肪類雜質，使蛔蟲卵更容易下沉。再次離心濃縮樣品并棄去上部脂肪雜質層級緩沖液層，獲得的含卵沉淀層用飽和硝酸鈉溶液混勻，于計數框中靜置漂浮后鏡檢，即可測得水樣中蛔蟲卵的數量。
配套試劑和材料：
分析時請使用符合國家標準的分析純化學試劑，試驗用水為新制備的蒸餾水或者去離子水。
一：乙酸乙酯（C4H8O2）
二：乙酸-乙酸鈉緩沖液：PH=4.5
稱取15.0g三水合乙酸鈉(CH3COONa3H2O) ，溶于約800 ml實驗用水中，加入3.6 ml乙酸(CH;COOH)調節pH值至4.5， 用實驗用水定容至1000 ml。此溶液保質期為30d。
三：吐溫80溶液: q (C24H4O6) =1 %o。
移取1ml吐溫80(Tween80)，用實驗用水稀釋定容至1000ml,臨用現配。
四：飽和硝酸鈉(NaNO3) 溶液
稱取略多于實驗環境溫度對應溶解度的硝酸鈉(NaNO3),充分溶解于100g實驗用水中，用濾紙濾去殘渣，臨用現配。硝酸鈉在不同溫度下的溶解度見附錄A。
配套儀器和耗材：
分析時如有量器請使用符合國家標準的A級量器
一：顯微鏡：物鏡4x、10倍，目鏡10x倍
二：冰箱：0℃-4℃
三：水平轉子離心機：帶50ml螺口尖底離心管，離心力1000g以上
四：漩渦混合器
五：篩網：60目 ，孔徑250um
六：不銹鋼開口直壁容器10L（帶刻度
七：開口直壁量筒：1000ml A級
八：虹吸管
九：洗瓶
十：螺口尖底離心管50ml
十一：一次性巴氏滴管3ml、10ml
十二：微移液器：1000ul
十三：定量計數框：1ml網格、5ml型
樣品：
按HJ/T 91中對一般污染物采樣的要求，用10 L以上容積的塑料桶采樣。采樣前需用樣品蕩洗塑料桶，采集樣品量應≥10L,常溫下運回實驗室，立即進行過濾(7.1)和沉淀(7.2)。
分析步驟：
一：過濾
充分搖勻樣品，轉入不銹鋼開口直壁容器至10L刻度。如樣品中含有草梗、紙渣等較大雜質，需將樣品用篩網過濾，并用吐溫80溶液清洗篩網及雜質，洗液并入過濾后的10L樣品中。
二：沉淀
上述樣品在15 C~25 C室溫下靜置過夜沉淀12 h~24 h,用虹吸管小心吸取并棄去上清液，避免擾動，保留1 L含沉淀物的樣品，轉入1000 ml開口直壁量筒，分別用50 ml吐溫80溶液*清洗不銹鋼開口直壁容器3次，洗液并入開口直壁量筒。在15 C~25 C室溫下再次靜置過夜沉淀12h~24h,用虹吸管吸取并棄去上清液，避免擾動，保留90 ml~ 100 ml含沉淀物的樣品。
注1:若樣品中蛔蟲卵濃度在10倍檢出限以上(>50個/10L),采樣時，可只采總量不小于1L的樣品，取1L水樣直接進行第二步的量筒沉淀濃縮。當樣品中含有草梗、紙渣等較大雜質，同樣應先將樣品用篩網過濾，并用吐溫80溶液清洗篩網及雜質，洗液并入1 L樣品中沉淀。
離心：
沉淀濃縮后的樣品(7.2) 小心轉移至3個螺口尖底離心管，分別用15 ml 吐溫80溶液*清洗開口直壁量筒3次，洗液均勻并入3個螺口尖底離心管。以1000g 的離心力(離心機轉速計算見附錄A)離心15 min,用巴氏滴管小心吸取并棄去，上清液，少量留之，避免帶出沉淀。
用少量吐溫80溶液將3個離心管中的沉淀進行懸浮，將沉淀量少的2個離心管中的懸浮液并入沉淀量多的一個離心管中:分別用3 ml~ 5 ml吐溫80溶液*清洗被轉移懸浮液的2個離心管，每支清洗3次，確保沒有沉淀被丟棄，洗液并入沉淀量多的離心管。以1000g的離心力離心15min, 用巴氏滴管小心吸取并棄去上清液，少量留之，避免帶出沉淀。
脂類雜質分離去除：
用與離心后沉淀等體積的乙酸-乙酸鈉緩沖液對沉淀進行懸浮(即:離心后沉淀體積為2 ml,加入2ml緩沖液。如果離心后沉淀體積不足2ml,加入緩沖液至4 ml。以確保用乙酸乙酯浸提后，沉淀上方有足夠體積的緩沖液，便于脂類雜質層*傾出，且避免蛔蟲卵沉淀層的丟失。
加入2倍離心后沉淀體積的乙酸乙酯，用渦旋混勻器*混合。以.1000g的離心力離心15 min， 樣品被分為清晰的三層。所有的非脂肪物質、重碎片，包括蛔蟲卵、幼蟲和原生動物在底層;中間層是緩沖液層;脂肪和其他脂溶性物質在上方形成黑而厚的一層。
將上層和中間層液體平穩傾出棄去，記錄底層沉淀體積。如有必要，可用細針在離心管壁四周對上層的脂肪層進行松動。
鏡檢：
加入5倍底層沉淀(7.4)體積的飽和硝酸鈉溶液，對分離去除脂類雜質后的含卵底層沉淀進行懸浮。該懸浮液可置于0 C~4 C冰箱冷藏保存，備檢，于1周內檢測完畢，檢測時需將其靜置至室溫。充分搖勻懸浮液，將其轉入定量計數框靜置5 min,在顯微鏡下計數，直至全部懸浮液鏡檢完成。分別用1 ml飽和硝酸鈉溶液充分洗滌鏡檢完的離心管3次，將洗液轉入定量計數框，按以上步驟鏡檢。所有檢測到的蛔蟲卵全部計數。
鏡檢時，需保持環境條件的穩定，無震動和風擾，緩移計數框，自上而下“U”型逐列計數。蛔蟲卵鑒定方法見附錄B。
空白對照試驗：
取10L同批次試驗用水，按以上采樣及分析步驟進行全程序樣品的測定。
結果計算于表示：
計算結果：
C------水樣中蛔蟲卵濃度（個/10L）
N-----檢測到的所有蛔蟲卵數（個）
Q-----實際水樣體積（10L）
結果表示：
水質中蛔蟲卵的測定，實驗終結果取整數，以“個/10L”為單位
精密度：
6家實驗室分別對實際樣品和低濃度(20 個/10L)、中濃度(40 個/10L)、高濃度(80個/10L)自配樣品的蛔蟲卵進行測定，實驗室內相對標準偏差范圍分別為:6.5%~18.9%，10.1%~22.0%，12.8%~23.8%， 8.9%~ 17.4%;實驗室間相對標準偏差分別為5.8%、5. 5%、4.9%、4.8%; 重復性限(個/10L)為244、3、7、11;再現性限(個/10L)為260、3、7、11。
質量保證和質量控制：
每批次樣品至少做1個全程序空白實驗，并取10%的樣品進行平行樣測定，全程序空白實驗不得檢出蛔蟲卵，平行樣間的相對偏差不得超過30%。
廢物處理：
實驗中虹吸液煮沸10min后可按普通廢棄物處理，含乙酸乙酯的廢棄液應集中保管，委托有資質的單位進行處理。
注意事項：
實驗用過的器具均需進行高溫滅活，置于水中煮沸10min后方可再次使用。
實驗操作人員要注意自身防護，試驗時要穿戴工作服、乳膠手套、及口罩等，同時還要避免蛔蟲卵的樣品污染實驗室環境。
附錄A
硝酸鈉水中溶解度、離心機離心力及轉速計算公式
A.1 硝酸鈉在水中的溶解度
表A.1 硝酸鈉水中溶解度
溫度（℃）
溶解度（g）
0
73
10
80
20
87
30
95
40
103
A.2離心力計算公式：
附錄B
蛔蟲卵的檢定
B.1蛔蟲卵的形態特征
B.1.1受精蛔蟲卵
蟲卵呈短橢圓形，大小為45 μm~75 μmx35 μm~ 50 μm。卵殼很厚，自外向內分為三層:受精膜、殼質層和蛔甙層，殼質層較厚，另兩層極薄，在普通顯微鏡下難以分清。卵殼內有一個大而圓未分裂的受精卵細胞，與卵殼間常見有新月形空隙。卵殼外有一層由蟲體子宮分泌形成的蛋白質膜，其表面凹凸不平呈波浪狀。隨糞便排出的蟲卵常被膽汁染成黃色或棕褐色。
B.1.2未受精蛔蟲卵
蟲卵呈長橢圓形或不規則形，大小為88 μm~94 μmx39 μm ~44 μm，卵殼與蛋自質膜均較受精蛔蟲卵薄，淡黃色，無蛔甙層，卵殼內含有許多大小不一的屈光顆粒。
B.1.3感染期蛔蟲卵
卵內含有一.條卷曲的幼蟲。
B.1.4蛋白質膜脫落的蛔蟲卵
若蛔蟲卵的蛋白質膜脫落，卵殼則呈無色透明，應注意與其他線蟲卵的鑒別。
B.2蛔蟲卵參考圖片
B.2.1蛔蟲卵模式圖
B.2.2發育各階段的蛔蟲卵
附錄C
蛔蟲卵配置樣品的制備
豬蛔蟲(Ascaris suum)活成蟲采集自屠宰場，用蒸餾水洗滌干凈后，放置于含4 %甲醛溶液內，0 C~4 C保存備用，可長期保存。
制備蛔蟲卵備用液時，選取2~3條雌性蛔蟲，用75 %乙醇消毒過的解剖刀，劃開蟲體，每條蛔蟲一- 對子宮選取靠近陰門的一段(2 mm~3 mm),解剖后，將含蛔蟲卵的內容物及組織碎片放入50ml離心管中，加入數顆直徑1mm玻璃珠及10ml生理鹽水，混勻后于渦旋混勻器振蕩3min~5min,用260目網過篩，取40ml生理鹽水分數次沖洗離心管和篩網，此時獲得的濾液中蛔蟲卵呈單個狀態存在。濾液加入甲醛至終濃度為4%，0 C~4 C保存備用，可保存1個月。即制即用時可不添加甲醛。
制備配制樣品時，搖勻蛔蟲卵備用液，用1000 μ1微量移液器，立即吸取適量的蛔蟲卵備用液于1ml定量計數框(網格)中，計數后用250μl微量移液器向計數框中添加或移出蛔蟲卵至所需數量。將計數框中所有的液體用吐溫80溶液沖洗入配制樣品中。再在顯微鏡下檢測計數框，確保無蛔蟲卵殘留。
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